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Plant Physiology:产油海洋微拟球藻中发现一种碳汇的新分子

来源:水生所 2022-05-19 16:26

该课题组以海洋微拟球藻为对象,揭示了PDAT在调控脂质代谢、汇集细胞内碳流方面的重要作用,并发现在胁迫条件下细胞合成一种用于替代TAG的新的碳储存分子——低不饱和酰基磷脂酰乙醇胺。

  微拟球藻(Nannochloropsis)是一类属于真眼点藻纲(Eustigmatophyceae)、球形或近似球形的单细胞真核生物。与其他真核微藻显著不同的是,该属的种类除叶绿素a外,并不含有其他类型的叶绿素。目前,该属有7个已定种(N. gaditanaN. salinaN. oculataN. oceanicaN. australisN. granulataN. limnetica,最新的分类系统已将前两个种归至Microchloropsis属)。它们具有较高的光合作用效率、生物量和油脂(三酰甘油,TAG)含量,富含二十碳五烯酸(EPA),是工业化生产EPA的优质原料,也是鱼类幼体和轮虫的饵料,已被批准作为人类新食品的原料。近年来,由于基因组序列的公布及遗传转化体系的建立,该属的种类已成为具有潜力的工业产油模式研究藻种。

  中国科学院水生生物研究所研究员胡晗华团队保存有该属的所有种类及众多株系,十多年来以这些藻株为对象开展了系列基础研究。研究人员首先在所有6个海洋种类中建立起了基于PCR产物的高效遗传转化系统(Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 2014)及基于RNA干扰的基因敲降体系(Plant Journal, 2017),并通过多年努力在该属中唯一的一个淡水藻——湖泊微拟球藻(N. limnetica)中利用化学预处理的方式实现了基于电穿孔的高效遗传转化(World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2019)。 

  海洋微拟球藻(N. oceanica)是该属中常用的一个模式产油藻种,其高油含量与基因组中含有多达13个参与TAG合成的二酰甘油酰基转移酶(DGAT)有关;此外,其基因组还编码一个磷脂——二酰甘油酰基转移酶(PDAT),也能催化合成TAG。与DGAT以酰基辅酶A作为酰基供体不同,PDAT通常依赖极性脂作为酰基供体合成TAG。对酵母、莱茵衣藻和拟南芥等模式生物的研究表明,细胞内PDAT和DGAT的功能在进化上可能是保守的,PDAT主要在非胁迫下起作用,而DGAT在胁迫下起作用。海洋微拟球藻含有分别在胁迫和非胁迫下起作用的DGAT,其PDAT在脂质调控方面扮演什么角色? 

  近日,该课题组以海洋微拟球藻为对象,揭示了PDAT在调控脂质代谢、汇集细胞内碳流方面的重要作用,并发现在胁迫条件下细胞合成一种用于替代TAG的新的碳储存分子——低不饱和酰基磷脂酰乙醇胺。基于系统进化分析发现,微拟球藻PDAT(NoPDAT)与其他光合生物的PDAT存在较远的亲缘关系,精细定位发现该蛋白质定于叶绿体最外一层膜——叶绿体内质网膜(二次内共生中来自于寄主内膜),暗示NoPDAT与其他光合生物可能在功能上存在差异。对NoPDAT过量表达、敲降藻株的表型分析发现,NoPDAT对细胞内TAG积累的贡献至少占30%(图1),其功能缺失没有引发调控任一DGAT的补偿机制。 

  研究人员还发现,NoPDAT的突变导致了细胞内一类新的磷脂酰乙醇胺(PE)大量积累,这类特殊的PE与细胞内富含多不饱和脂肪酸(C20:4和C20:5)的功能性PE不同,它们的脂酰基是C16:0、C16:1或C18:1等低不饱和脂肪酸,特称为“LU-PE”。细胞内LU-PE的含量还与培养的CO2浓度显著正相关。过量表达或/和敲降与PE合成和降解路径所有相关基因均检测不到LU-PE的积累,提示LU-PE的积累可能仅受NoPDAT调控。此外,NoPDAT突变还激活细胞合成缩醛磷脂(PME),其含量也与CO2浓度显著正相关。结果表明,NoPDAT突变导致的TAG合成受阻,将使得细胞内的碳流向LU-PE及缩醛磷脂,尤其在高浓度CO2条件下,LU-PE将替代TAG成为细胞内主要的碳汇(图2)。 

  缩醛磷脂是存在于几乎所有人类组织的特殊醚磷脂,在大脑里含量最高,缩醛磷脂不足与阿尔茨海默症等老年疾病有密切关联。已有研究认为光合生物不能合成该磷脂。该研究为实现使用微藻商业化生产缩醛磷脂提供可能途径,目前已被授权一项题为“一种可提高微藻缩醛磷脂含量的方法及RNA干扰片段”的发明专利。

  相关研究成果以PDAT regulates PE as transient carbon sink alternative to triacylglycerol in Nannochloropsis为题,发表在Plant Physiology杂志上。研究工作得到国家自然科学基金和重大研究计划等的资助。北京大学、中国农业科学院院油料作物研究所、法国格勒诺布尔阿尔卑斯大学和美国马里兰大学研究人员参与部分工作。

 

  图1.NoPDAT细胞定位(A,绿色和红色荧光分别为NoPDAT-eGFP融合表达蛋白与叶绿体信号)、NoPDAT敲降导致的中性脂减少(B)及总脂肪酸(TFA)和TAG含量变化(C) 

图2.NoPDAT调控海洋微拟球藻细胞脂质代谢的模式图

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